在有限的细胞核空间中，基因组的大部分是紧密折叠的，仅留下需要转录的部分是易接近的。美国斯坦福大学的Howard Chang说，人们有“巨大的兴趣”来确定一个给定的细胞类型中哪些基因组区域是有活性的。这正是Chang开发一种被称作ATAC-seq(Assay for Transposase-Accessible Chromatin with highthroughput sequencing, 利用高通量测序检测转座酶易接近的染色质)的技术的动机。在ATAC-seq技术中，DNA标记(作为转座子发挥作用)通过酶促反应被整合到基因组的开放区域，然后通过测序，它们被用来鉴定这些区域。

　　Chang在2013年就描述了ATAC-seq，但是他说，“我们是让细胞破碎来获得这种信息，因此我们不能了解这些易接近的基因组区域的三维结构。”

　　三年过去了。Chang如今开发出ATAC-see(assay of transposase-accessible chromatin with visualization, 利用可视化检测转座酶易接近的染色质)技术。这种技术利用与ATAC-seq相同的酶学方法来整合DNA标记，不同的是，与这些DNA标记相偶联的荧光团允许他们可视化观察到三维的固定不动的细胞核。而且，一旦观察到这些细胞，通过测序就能够鉴定出发生标记的区域。

　　利用ATAC-see技术，Chang团队发现不同于大多数细胞的是，在中性粒细胞内，易接近的染色质倾向于位于细胞核的边缘。这种分布似乎促进中性粒细胞胞外陷阱(neutrophil extracellular trap, NET)形成。NET是中性粒细胞重要的杀菌利器。这种细胞直接把自己的DNA和组蛋白吐到胞外，形成一个网状的陷阱来捕捉和杀死病原菌。然而，NET也能够促进癌症转移。

　　Chang团队也利用ATAC-see技术来研究在细胞周期期间，整个基因组的易接近性如何发生变化。

　　美国马萨诸塞大学医学院的Job Dekker(未参与这项研究)说，“染色质研究领域的重大挑战之一就是将利用基因组方法获得的数据与利用成像法获得的数据整合在一起。因此，针对这种检测技术，我喜欢的一点就是它将这两者结合在一起。”