遗传性视网膜疾病（IRD）是一种由于基因突变所引发的致盲性疾病，许多患者至中年时会完全失明。而对于该种疾病，目前医疗界尚无高效的治疗方法。不过，随着基因编辑技术在医学临床的应用，特别是碱基编辑的成熟应用，似乎为解决该问题提供了契机。
再生医学网获悉，近日，来自美国加利福尼亚大学和凯斯西储大学的研究团队在《Nature Biomedical Engineering》上发表了题为Restorationof visual function in adult mice with an inherited retinal disease via adeninebase editing的研究成果，其利用腺嘌呤碱基编辑器（ABE），克服了CRISPR-Cas9系统的脱靶突变、低编辑效率等障碍，成功纠正基因突变，恢复了患有遗传性视网膜疾病的成年小鼠的视觉功能。
研究人员以RPE65基因的3号外显子上发生单碱基突变，导致该可再生11-顺式视黄醛和视色素的蛋白无法表达的rd12小鼠作为LCA临床相关模型进行研究。其首先在体外细胞中评估了以同源重组修复（HDR）的方式实现对突变位点的修复，结果发现HDR的效率仅为0.03%，不能恢复RPE65的功能和改善疾病表型。
之后，研究人员尝试向视网膜下递送ABE，通过将RPE65基因互补链上的A转换为G的方式，以更高的精度和最小的脱靶率来纠正该病理突变。其设计出密码子优化后的带有sgRNA-A5，sgRNA-A6的ABE变体（ABEmax），并通过rd12细胞系验证了ABE的密码子优化可以产生更稳定和更高的蛋白表达，ABEmax具有更强的碱基编辑效率，可以最小的脱靶率纠正无义突变。
然后研究人员生产了三种慢病毒载体，将sgRNA和ABEmax通过注射递送至小鼠视网膜的色素上皮层（RPE）组织进行表达，以评估该碱基编辑方法的功效。注射五周后，研究人员通过蛋白质免疫印迹法检测了处理和对照小鼠眼中RPE65蛋白的恢复情况。结果发现，带有sgRNA-A5，sgRNA-A6的ABEmax的处理使小鼠成功表达了定位正确的RPE65蛋白。对每只眼睛的矫正细胞百分比进行分析，发现A5和A6处理分别矫正了32％和17%的细胞。
为了进一步量化其矫正效率，研究人员对小鼠RPE组织中分离的DNA进行了高通量测序。结果表明，sgRNA-A5的ABEmax处理的最大矫正率可高达29％，sgRNA-A6的ABEmax最大矫正率可达11％。通过染色体外环状DNA测序（CIRCLE- seq）对sgRNA-A5和A6的脱靶活性进行评估，结果并未检测到对照RPE组织的背景水平以上的脱靶编辑。
然后研究人员检测了矫正效率更高的A5处理的rd12小鼠是否可以恢复功能性视觉循环，以进一步评估碱基编辑的治疗效果。结果发现，经A5处理的rd12小鼠眼睛在完全黑暗适应后显示出11-顺式视黄醛的大量生成，视觉周期得以恢复，且新生成的11-顺式视黄醛可在闪光刺激后立即光异构化为全反式视黄醛，产生视觉。此外，该基因编辑处理的小鼠也被验证了可以恢复其视网膜细胞和视觉功能，从视网膜到初级视觉皮层的视觉通路的功能完整性以及皮层反应也得到了恢复。
该研究的通讯作者Krzysztof Palczewski表示：在这项概念验证研究中，我们提供了基因编辑在矫正引起遗传性视网膜疾病的突变和恢复视觉功能方面的临床潜力的证据。在接受基因编辑治疗后，我们研究的小鼠可以根据方向，大小，对比度以及时空频率来区分视觉变化，这些结果非常令人鼓舞，这代表着遗传性视网膜疾病治疗方法的重大进步”。
基因编辑作为新兴技术，已在医学领域得到了广泛研究与应用。
再生医学网认为，随着基因编辑技术的问世及趋于成熟，为预防和治疗各种疑难疾病提供了最为坚实可靠的技术支持。相信随着基因编辑技术的进一步完善，届时将会迎来更加广阔的应用空间。
